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Técnicas de estudo em microscopia

Fixação: preservar a morfologia dos tecidos (formol)

Desidratação: remover a água dos tecidos (álcool)

Clareamento: embeber a peça em substância miscível com a parafina (xilol)

Impregnação: a parafina impregna o tecido e o torna mais fácil para a obtenção de corte no micrótomo

Inclusão: obtenção do bloco de parafina de forma regular para ser cortado no micrótomo

Cortes

Corantes

Os componentes dos tecidos que se coram com corantes básicos são chamados de basófilos (azul-de-toluidina, azul-de-metileno, hematoxilina...), já componentes que se coram com corantes ácidos são chamados de acidófilos (Orange G, fucsina ácida, eosina...).

Hematoxilina: cora o núcleo de azul

Eosina: cora o citoplasma, as proteínas de vermelho

Microscópio de contraste de fase: facilita a visualização de células e tecidos vivos.

Microscópio confocal: realiza cortes ópticos.

Microscópio de polarização: estruturas aparecerão brilhantes contra um fundo escuro, pois as moléculas orientadas são anisotrópicas ou birrefringentes (revela a presença de moléculas alongadas e orientadas).

Microscópio óptico x Microscópio eletrônico: no microscópio óptico, a luz é absorvida pelas estruturas coradas, já no eletrônico, os elétrons são desviados pelos átomos de elevado peso atômico (elétron densas).

Membrana celular:

  • Proteínas integrais: incorporadas na membrana

  • Proteínas periféricas: fracamente associadas à membrana

  • Proteínas transmembranas: atravessam inteiramente a membrana

Difusão passiva: moléculas pequenas e íons atravessam a membrana sem consumo de energia.

Transporte ativo: transporte através de proteínas transportadoras e com consumo de energia.

Transporte facilitado: sem consumo de energia, mas com participação de proteínas.

Endocitose: entrada de macromoléculas

Exocitose: saída de macromoléculas

Criostato: obtenção rápida de cortes sem passar por todas as etapas (congelamento = não remove lipídeos e enzimas)

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